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更新時間:2026-07-29
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OLYMPUS CKX53倒置顯微鏡熒光升級及
活/死細胞雙色熒光染色(AO/PI法)檢測應用解決方案
基于 CKX-UVBG-E 電動智能熒光模塊的標準化細胞活性評估指南
圖 1:加裝 CKX-UVBG-E 電動智能熒光模塊后的 OLYMPUS CKX53 倒置熒光顯微鏡整機結構
一、 方案背景與 AO/PI 雙色熒光檢測原理
在細胞生物學、組織工程、腫瘤學評估及原代細胞提取過程中,精準鑒別細胞存活狀態是核心檢測步驟。吖啶橙(Acridine Orange, AO)與碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)聯合使用的雙色熒光染色法,能夠特異性標記質膜完整性。相較于傳統臺盼藍明場染色,AO/PI 雙色熒光法能夠有效排除原代樣品中的無核紅細胞、細胞碎片及雜質干擾,展現出更高的檢測特異度與識別準確率。
1.1 AO 與 PI 熒光探針的作用機制
熒光探針 | 膜穿透特性 | 胞內分子靶點與反應機制 | 激發/發射光譜及 CKX-UVBG-E 適配通道 |
吖啶橙 (Acridine Orange, AO) | 膜透過型 | 能夠自由穿透膜結構完整的活細胞與死細胞質膜,與雙鏈DNA嵌合結合發出強綠色熒光 | Ex: 470/35 nm / Em: 525/45 nm |
碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) | 非膜透過型 | 無法穿越膜結構完整的活細胞質膜;僅當細胞死亡質膜破損時穿入胞內,與雙鏈DNA嵌合發出紅色熒光(產生 FRET 掩蓋/吸收綠光) | Ex: 545/25 nm / Em: 605/65 nm |
二、 CKX53 倒置顯微鏡熒光升級方案(CKX-UVBG-E 模塊)
常規奧林巴斯 CKX53 顯微鏡主要用于明場及相襯活細胞觀察。通過加裝專為 CKX53 量身開發的 CKX-UVBG-E 電動智能熒光模塊,無需更換顯微鏡主體即可快速升級為高性能倒置熒光顯微平臺:
2.1 高度集成一體化與內陷槽緊湊安裝設計
CKX-UVBG-E 模塊將大功率 LED 光源與熒光激發塊高度集成于單一盒體內,采用了內陷安裝槽與殼體卡扣設計,結構緊湊且外部固定螺絲少。升級后熒光模塊極薄,不遮擋載物臺下方空間,確保物鏡轉換順暢無阻。
圖 2:CKX-UVBG-E 熒光模塊在 CKX53 載物臺下方的內陷式緊湊安裝結構
2.2 電動智能通道切換與 1.44 英寸彩色大屏
模塊配備 1.44 英寸彩色顯示屏,以彩色方柱和百分比數值清晰顯示當前通道狀態及激發光亮度。實體按鍵與編碼標記讓通道切換一目了然;配合防滑指壓旋鈕,單指即可快速旋轉與點擊操控,極大提升了實驗效率。
圖 3:CKX-UVBG-E 1.44英寸彩色大屏與單指防滑多功能操控旋鈕
2.3 長壽命 LED 光源與通道光強智能記憶
采用大功率 LED 光源(使用壽命 > 30000 小時),即開即用,無需傳統高壓汞燈繁瑣的預熱與冷卻等待。系統支持多達 4 色獨立熒光通道,內置通道光強記憶功能——當在 B 通道(檢測 AO 綠光)與 G 通道(檢測 PI 紅光)之間切換時,模塊能自動還原之前設定的光照強度,避免重復微調導致樣本熒光淬滅。
圖 4:CKX-UVBG-E 電動智能熒光模塊外觀與顯示控制面板
2.4 低風噪主動循環散熱與軟件聯動擴展
模塊內置低風噪、低震動風扇進行主動循環風散熱,有效保障 LED 燈珠與濾光片的溫度穩定,防止光譜中心波峰漂移。同時,模塊支持外部協議通訊與軟件聯動控制,可無縫對接電腦端的圖像采集與分析軟件。
【CKX-UVBG-E 模塊升級的核心優勢】 豐富通道選配:標配 UV(DAPI)、B(FITC/GFP)、G(TRITC/CY3)三色組,并可選配 Y(mCherry)、R(CY5)等,滿足多樣化熒光探針需求。 |
三、 AO/PI 雙色熒光檢測標準解決方案流程
為確保升級后的 CKX53 顯微鏡在進行 AO/PI 雙色檢測時獲得高信噪比與高重復性的數據,建議遵循以下標準化實施流程:
步驟 1:試劑準備與細胞樣品洗滌
• 工作液配制:使用無熒光背景的 PBS 緩沖液將 AO 與 PI 母液稀釋成雙染色工作液(推薦終濃度:AO 約 5–10 μg/mL,PI 約 10–20 μg/mL),現配現用并避光保存。
• 樣品洗滌:取待測貼壁或懸浮細胞,用溫育的 PBS 輕輕洗滌 1–2 次,消除培養基成分及殘余血清對熒光染色的干擾。
步驟 2:樣品混合染色與短時溫育
• 染色混合:將 AO/PI 混合工作液與細胞懸液按 1:1 比例充分混合(或直接加至細胞培養孔中),使染色液均勻覆蓋細胞。
• 避光溫育:室溫避光孵育 5–10 分鐘。由于 AO/PI 與核酸結合迅速,建議在 20 分鐘內完成上樣與圖像采集。
步驟 3:CKX53 上樣與明場/相襯快速定位
• 放置樣品:將染色后的血球計數板或培養皿置于 CKX53 載物臺上,使用 Universal Holder 固定。
• 相襯尋焦:開啟 LED 明場光源,利用 iPC 整合相襯系統(4X–40X 切換無需換相襯環)快速尋找代表性視野并完成對焦。
步驟 4:電動智能熒光通道切換與采集
• B 通道采集(活細胞):通過 CKX-UVBG-E 單指按鍵一鍵切換至 B 激發通道(FITC),LED 光源開啟,采集綠色胞質/胞核熒光圖像(綠光細胞為活細胞)。
• G 通道采集(死細胞):按下按鍵快速切換至 G 激發通道(TRITC),智能還原預設紅光功率,采集紅色胞核熒光圖像(紅光細胞為死細胞/膜受損細胞)。
步驟 5:圖像合成與細胞存活率定量評估
• 圖像傳輸與疊加:通過相機接口將圖像傳輸至電腦,利用配套分析軟件對 FITC 綠光通道與 TRITC 紅光通道進行 Overlay/Merge 通道疊加。
• 存活率計算:分別統計視野內的綠光活細胞數(Live)與紅光死細胞數(Dead),計算細胞存活率:Vitality (%) = [Live / (Live + Dead)] × 100%。
四、 典型圖像結果與數據評估
在 CKX53 優良光學系統與升級后 CKX-UVBG-E 模塊的支撐下,AO/PI 雙色染色呈現出分明的形態學與熒光光譜特征:
圖 5:升級熒光系統后獲取的高信噪比多色細胞熒光觀察成果圖譜
觀察模式/通道 | 標本熒光形態特征 | CKX53 升級后成像優勢 |
B 激發通道 (FITC) | 活細胞 | 大功率 LED 高效聚光,全視野激發均勻;獨立帶通濾光片使綠光純潔無雜光。 |
G 激發通道 (TRITC) | 死細胞 / 膜受損細胞 | 光強記憶功能確保切換無延遲,高截止濾光片有效抑制背景自發熒光,死細胞紅核邊界清晰。 |
雙通道 Fusion 疊加 / | 綜合存活率評估 | 電動切換順暢,多通道疊加無焦平面與位置偏離;圖像高信噪比為精準計數提供依據。 |
五、 規范操作注意事項與設備保養建議
5.1 染色觀察時間控制:AO/PI 與核酸結合迅速,染色混合后建議在 20 分鐘內完成觀察。時間過長可能導致 AO 濃度游離變化或 PI 被活細胞少量吞噬造成假陽性。
5.2 LED 激發強度適度調控:充分利用 CKX-UVBG-E 模塊的無級調光與光強記憶功能,在拍攝對比度滿足的前提下適當調低激發功率,減緩熒光探針淬滅。
5.3 風扇風道防堵與清潔:保證熒光模塊側面主動散熱風扇的風道通暢,避免遮擋,定期用干燥氣吹清理風扇網罩灰塵。
5.4 鏡片與部件擦拭維護:若載物臺或物鏡沾染培養基或染色液,應及時用 75% 乙醇濕潤無塵紙輕輕擦拭,保持優良的透光性能與設備衛生。